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發(fā)光細菌暗變種檢測環(huán)境樣品致突變性

更新時間:2008-04-22 18:00 來源: 作者: 童中華 胡洪營 魏東斌 閱讀:1520 網(wǎng)友評論0

摘要:在發(fā)光細菌的應(yīng)用過程中人們發(fā)現(xiàn)并分離出了它的自發(fā)暗變種(K變種),如1980Ulitzue等從鮒魚發(fā)光桿菌P. leiognathifenli分離到自發(fā)暗變種,并根據(jù)化合物使暗變種恢復(fù)發(fā)光的能力檢測其致突變性,證明在各種堿基置換劑和移碼劑存在下,可大大提高暗變種在世代中的回復(fù)突變率。文獻證明DNA合成抑制劑和DNA插入劑也可提高其回復(fù)突變率。該項技術(shù)已被美國Azur公司(原Microbics公司)定名為MutatoxTM方法。

關(guān)鍵字:發(fā)光細菌 檢測 環(huán)境樣品 突變性

 

 

顧宗濂于1993年首次在國內(nèi)報道利用自行分離到的明亮發(fā)光桿菌的自發(fā)暗變種T9171菌株,測試五種遺傳毒物的致突變性,指出暗變種對化合物致突變效應(yīng)的靈敏度高于Ames試驗,發(fā)光細菌暗變種試驗可望成為一種簡易靈敏的生物致突變性測試方法。

本文對發(fā)光細菌暗變種的檢測原理、測試方法和應(yīng)用研究作簡要介紹,并與Ames試驗進行比較,以推進暗變種方法在我國環(huán)境監(jiān)測中的研究和應(yīng)用。

 

1. 檢測原理

對發(fā)光細菌經(jīng)過理化方法誘變處理后,使其失去發(fā)光能力或發(fā)光強度極弱,稱為暗變種(K. variant)。若暗變種接觸致突變物,在世代分裂時可導致突變,恢復(fù)一定程度的發(fā)光能力。利用暗變種恢復(fù)發(fā)光的現(xiàn)象,可對各種遺傳毒物或環(huán)境樣品進行篩選、檢測。這可能是由于致突變物使調(diào)節(jié)基因發(fā)生突變,使其不能產(chǎn)生或產(chǎn)生無活性的抑制物質(zhì),也可能使DNA雙鏈發(fā)生構(gòu)象改變,使抑制物質(zhì)不能與之結(jié)合而失去抑制效應(yīng),總之,真正的回復(fù)突變機理目前還不清楚。

 

2. 測試方法

AZUR 公司采用費氏弧菌Vibrio fischeri 的暗變種M 169,制成凍干粉于-20保存,測定前復(fù)蘇,在27-30與待測物接觸16,20,24小時或更長時間以后檢測發(fā)光強度,同時做陰性和陽性對照。一般規(guī)定,對某一化合物的所有測試濃度,若樣品發(fā)光比陰性對照發(fā)光≤2,則認為該化合物無致突變性;若樣品的發(fā)光為陰性對照的至少2倍,則認為反應(yīng)陽性,至少連續(xù)2個濃度為陽性才能確定為有致突變性。

顧宗濂在研究初期采用暗變種的新鮮培養(yǎng)液,20環(huán)境中待測物與培養(yǎng)液在測定管中靜止培養(yǎng),于0,14小時以后每隔4小時測發(fā)光強度,至各管發(fā)光強度達最大值后明顯下降為止。若樣品的最大發(fā)光值為同一時間空白對照的至少2倍,則認為反應(yīng)陽性。1999年謝思琴、顧宗濂等報道了采用4保存的暗變種凍干粉,20振蕩復(fù)蘇,與待測化合物接觸振蕩培養(yǎng)24小時后每隔3-4小時測定一次發(fā)光強度。以樣品發(fā)光強度為空白對照的3倍者為陽性效應(yīng),若樣品的5個平行系列中有3個陽性效應(yīng),即認為該樣品具有致突變性;若樣品的平行系列中陽性效應(yīng)數(shù)不足3個,則認為陽性可疑。

 

3. MutatoxAmes試驗的方法比較

MutatoxAmes試驗屬于體外致突變性檢測方法,都是細菌法,使用大鼠肝臟提取液S9作為代謝活化因子。MutatoxAmes試驗相比具有快速、簡便等特點,具體從以下幾點加以討論:

(1) Mutatox試驗中使用的發(fā)光細菌暗變種是從AZUR 公司購買的真空包裝凍干粉,-20保存,測試菌株不需要進行預(yù)試驗,復(fù)蘇凍干粉即可用于試驗。Ames試驗中菌液準備工作量大。冷凍保存的菌種先進行增菌培養(yǎng),然后進行菌株生物學性狀的鑒定,若生長及生物學性狀不符合要求,應(yīng)對其進行劃線分離。此外還要進行例如各種培養(yǎng)基、營養(yǎng)液的準備和滅菌等準備工作。

(2) Mutatox試驗不需要嚴格的無菌條件。一般情況下Mutatox測試不受環(huán)境中存在的非發(fā)光細菌的影響,只有當雜菌的濃度過大(約大于105/mL)時才需要用0.22μm的膜進行過濾。同時,Mutatox測試介質(zhì)含有高濃度鹽、低濃度營養(yǎng)液和一些廣譜性抗菌素,相對高濃度測試菌株的加入,以及測試終點的檢測特點,大大降低了可能進入測試系統(tǒng)的雜菌對測試結(jié)果的影響。Ames試驗需要進行嚴格的無菌操作,對工作人員的微生物實驗技能要求較高。因為雜菌的存在會嚴重影響平皿滲入法計算回變菌落數(shù)。

(3) Mutatox方法不需要繁瑣且昂貴的連續(xù)培養(yǎng),批量生產(chǎn)的凍干粉保證了其品質(zhì)的穩(wěn)定性,并能減小其遺傳變異。試驗一般只需要24小時即可完成,操作簡便、花費低。Ames試驗一般需要48-72小時完成,要配制多種培養(yǎng)基,所需材料多、費用高、費時較多。

(4)為了使Mutatox方法標準化,已經(jīng)有大量的工作比較了Mutatox方法與Ames試驗對單一化合物和環(huán)境樣品致突變性檢測的靈敏度和準確性。Johnson B.T. 8種典型致突變前體物的檢測結(jié)果證明,Mutatox方法和Ames試驗在定性和定量兩方面的靈敏度相近,Mutatox方法可成為檢測復(fù)雜環(huán)境中致突變物質(zhì)的一個有效的監(jiān)測手段。謝思琴、顧宗濂等對發(fā)光細菌暗變種T9171的靈敏度進行了研究,結(jié)果充分說明T9171試驗與Ames試驗檢測遺傳毒物所反映的遺傳毒性水平具有較好的一致性。

 

4.應(yīng)用

近年來,科學工作者已經(jīng)用發(fā)光細菌暗變種檢測出100多種單一化合物的致突變性,同時也用于檢測各種環(huán)境樣品的致突變性。Kwan等用Mutatox方法測試了河水和沉積物的有機提取物的致突變性,同時檢測了其急性和慢性毒性,證明Mutatox是成組試驗(battery of tests)中有用的方法。Békaert等利用AmesMutatox試驗、活體兩棲動物微核試驗對被PAHs和重金屬污染的土壤浸出液進行致突變性檢測,通過非過濾樣品和過濾樣品的比較試驗,指出Mutatox試驗中樣品不經(jīng)過0.45μm膜過濾能更準確地檢出顆粒物上吸附的生物活性污染物的致突變性。

此外,JohnsonMutatoxMicrotox方法測定了50多種農(nóng)藥、致突變劑和工業(yè)污染物,Mutatox方法對各種化合物的敏感性與文獻報道的Ames實驗結(jié)果相一致,統(tǒng)計分析結(jié)果表明急性毒性和致突變性之間存在著明顯的相關(guān)性(p<0.05),并利用這兩種方法測試了8個有機沉積提取物。

1993年以來,我國學者利用明亮發(fā)光桿菌的自發(fā)暗變種T9171進行了一些研究工作。首先研究了T9171暗變種對5種已知的致突變劑的回復(fù)突變效應(yīng),利用所建立的實驗方法檢測了工業(yè)廢渣的致突變效應(yīng),結(jié)果與Ames試驗結(jié)果的趨勢相似。將暗變種T9171制成凍干粉,采用改進的實驗方法研究了36種有機化合物的致突變效應(yīng),并與Ames試驗比較,以一致陽性的受試物最低劑量進行相關(guān)分析,在0.01的顯著性水平上兩種方法的吻合率達69%。趙華清等將此方法應(yīng)用于環(huán)境樣品中,檢測了14種環(huán)境水樣和9種化合物的基因毒性,結(jié)果說明加S9能大大提高發(fā)光細菌暗變種的檢測靈敏度。

 

Mutatox方法在國際上已經(jīng)得到了一定程度的應(yīng)用,但是由于凍干粉價格相對較高,很難在我國推廣。我國學者自行分離出暗變種T9171,并進行了初步的研究,但該法的測定步驟及其判斷標準還有待于進一步完善。隨著簡便、快速、經(jīng)濟的發(fā)光細菌暗變種測試方法的逐步成熟,并與其它化學和生物測試方法聯(lián)合,應(yīng)用前景將會非常廣闊。

 

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